支持。CW2528S适配 CWE2100 和 CWE960 全自动核酸提取仪。

严禁冷冻或高速离心，否则可能导致磁珠不可逆损坏。使用前需充分混匀，避免沉淀。

在 Buffer PLS 中加入 β-巯基乙醇，使其终浓度为 5%，可有效改善提取效果。

洗脱后可能有少量磁珠残留，不影响PCR、测序等下游应用，但可能影响吸光度读数。

若下游实验对pH值或EDTA敏感，可采用灭菌水作为洗脱液。使用前需调节水的pH值至7.0-8.5（可用NaOH调节），pH值低于7.0会显著降低洗脱效率。如需长期保存洗脱产物，推荐使用Buffer TB洗脱，并于-20℃保存。

DNA产量低通常由以下原因导致，请根据实际情况优化操作：

1) 试剂保存或使用不当。 Buffer GW1使用前应按试剂瓶标签向其中加入指定用量的无水乙醇。同时，请确保所有缓冲液均密封保存，防止蒸发导致浓度改变。Magbeads PN磁珠在使用前务必充分涡旋或颠倒混匀，使其充分重悬。

2) 样本处理或本身存在问题。 样本裂解不完全是产量低的一个主要原因。请确保植物组织已通过液氮研磨或组织破碎仪充分破碎为细粉。对于多糖多酚含量高的植物，请在Buffer PLS中加入β-巯基乙醇至终浓度5%以改善裂解效果。同时，样本的质量和储存条件也极大影响结果，应使用新鲜或妥善保存的样本，反复冻融会严重降解DNA。请确认您的样本起始量在推荐范围内。

3) 关键操作步骤执行存在偏差。

o 结合步骤： 加入Buffer ZB和磁珠后，应充分颠倒混匀30秒，并室温静置5分钟，其间颠倒混匀数次，确保DNA与磁珠充分结合。

o 洗涤步骤： 在漂洗阶段，要小心操作避免吸弃上清时意外吸走磁珠。

o 干燥步骤： 乙醇洗涤后，磁珠应室温干燥5-10分钟，直至无乙醇气味，但应避免过度干燥，否则会导致DNA洗脱效率下降。

o 洗脱步骤： 使用100 μL Buffer TB，并在65℃下震荡孵育10分钟，以确保DNA充分洗脱。

DNA在下游应用中表现不佳通常由以下原因导致：

1) 洗脱液中DNA含量极低。解决办法：请参考前文A6部分的解决方案。

2) 洗脱液中存在磁珠残留。解决办法：微量磁珠残留通常不影响实验结果。如需进一步去除，可将含有洗脱液的离心管置于磁力架上吸附后，小心转移上清至新管。

3) 存在盐离子残留。解决办法：严格按说明书操作顺序加入Buffer GW1和75%无水乙醇。 

4) DNA用量过多影响下游实验。解决办法：过量DNA可能抑制酶反应，建议使用分光光度计在260 nm处测定DNA浓度，精确控制使用量

1. A260/A280比值低（<1.7）。原因：蛋白或乙醇残留导致污染。解决方法：

1) 确保裂解充分：确保植物组织已通过液氮研磨或组织破碎仪充分破碎为细粉。 

2) 去除乙醇残留：漂洗步骤完成后将离心管固定于磁力架上室温静置5-10分钟使乙醇充分挥发。

2. A260/A280比值高（>2.0）。原因：核酸降解。

解决方法：

1) 避免降解：使用新鲜样本，避免样本反复冻融。

2) 优化洗脱：若采用灭菌水作为洗脱液。使用前需调节水的pH值至7.0-8.5（可用NaOH调节）。

可使用以下配套产品：

1) CW3048：CWSeq Universal DirectFast DNA Library Prep Kit

2) CW3047：CWSeq Super HiFi Amplification Mix for NGS

3) CW3360：SuperStar Universal SYBR Master Mix-SYBR