CWY118S适用于从福尔马林固定或石蜡包埋（FFPE）组织样本中提取核酸。

向每支25 mg蛋白酶K粉末中加入1.25 mL蛋白酶K保存液，轻柔混匀溶解，终浓度为20 mg/mL。分装后于-20℃保存，避免反复冻融。

脱蜡剂在低于18℃时会凝固，属正常现象。使用前可在56℃水浴中加热融化，不影响使用效果。

若裂解缓冲液1、裂解缓冲液2和脱蜡剂有结晶或者沉淀，请将其于56℃水浴重新溶解。

吸附柱堵塞通常因样本量过多导致。建议减少起始组织切片数量至1-2片，并确保裂解充分。

裂解离心后，上清液用于RNA提取，沉淀用于DNA提取。转移上清时切勿吸到沉淀。

1. 使用无RNase的塑料制品和枪头，避免交叉污染。

2. 玻璃器皿应在使用前于180℃高温下干烤4小时，塑料器皿可在0.5 M NaOH中浸泡10分钟，用水彻底冲洗后高压灭菌。

3. 配制溶液应使用无RNase的水。

4. 操作人员戴一次性口罩和手套，实验过程中要勤换手套。

1) 样本量过多或过少：切片数量或组织量超出推荐范围（建议1–5片，约1×1 cm²）可能导致裂解不彻底或吸附柱堵塞。建议减少起始样本量至1–2片，确保充分裂解和顺利过柱。

2) 脱蜡不彻底：脱蜡步骤若未彻底去除石蜡，会影响后续裂解和核酸释放。需确保脱蜡后彻底吸弃上清，避免残留脱蜡液。可用小体积枪头小心吸除残留液体。

3) 蛋白酶K活性不足：蛋白酶K若反复冻融或保存不当，活性下降会影响裂解效率。应置于-20℃保存，避免多次冻融。

4) 乙醇残留：漂洗后若乙醇未彻底挥发，会抑制后续酶反应并影响洗脱效率。建议延长离心晾干时间（室温5分钟），确保吸附柱完全干燥。

5) 洗脱条件不当：洗脱液pH值或体积不合适会影响回收率。若用水洗脱，需确保pH在7.0–8.5之间；建议使用洗脱缓冲液，适当延长室温静置时间（5分钟），或进行二次洗脱以提高产量。

6) 样本保存或处理问题：若样本长期暴露于空气中或固定不当，可能导致核酸降解。建议使用新鲜样本，避免表面氧化层，弃用接触空气的2–3片切片。

若RNA产物中存在DNA污染，可使用试剂盒内附的DNA酶进行处理。在RNA提取过程中，当样本裂解液结合至吸附柱RS并初步离心后，请按以下步骤操作：

1) 向吸附柱中加入350 μL漂洗缓冲液3，12,000 rpm离心1分钟，弃废液；

2) 配制DNase I混合液：52 μL灭菌水加入8 μL 10×DNA酶反应液和20 μL DNA酶（1 U/μL），混匀后全部加入吸附柱中；

3) 20–30℃孵育15分钟；

4) 再加入350 μL漂洗缓冲液3，12,000 rpm离心1分钟，弃废液，后续按说明书继续操作即可。

若DNA提取产物中存在RNA污染，可通过以下步骤处理：

在DNA提取过程中加入RNA酶A消化步骤。具体而言，在样本裂解后、加入裂解缓冲液2前，将样品温度降至室温，加入2μL浓度为100mg/mL的RNA酶A溶液，震荡混匀后室温放置2分钟，即可有效去除RNA污染。