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核酸提取或纯化试剂

¥798.00

CWY121S

型号二:96次/盒
型号三:96次/盒

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  • FAQs
本试剂盒提供了一种从人源粪便样本中提取总DNA,包括样本中的细胞、细菌、寄生虫以及病毒的总DNA的方法,也适用于含有高浓度PCR反应抑制剂的样本DNA的提取。本试剂盒采用独特的缓冲系统使裂解液中的 DNA 高效结合到吸附柱或 磁珠上,PCR和酶反应的抑制剂以及残留的杂质可通过洗涤步骤有效去除,最后使用低盐缓冲液或水洗脱,即可获得高纯度DNA。纯化得到的DNA可以直接用于二代测序(16s扩增子和宏基因组)、文库构建、PCR、qPCR、Southern Blot 、酶切分子标记等下游实验 。
保存条件 运输条件
除杂缓冲液2-8℃保存,其它组分4-30℃保存 除杂缓冲液低温冰袋运输,其他可在0-40℃运输,运输时间建议不超过7天
Q1:CWY121适用于哪些类型的样本?
A1:

CWY121适用于人源粪便样本中提取总DNA

Q2:磁珠悬浮液使用前应注意什么?
A2:

使用前需涡旋振荡,确保磁珠完全混匀。严禁离心或冷冻,否则可能对磁珠导致不可逆损伤。

Q3:是否支持自动化提取?
A3:

支持。该试剂盒可配套康为世纪品牌的32通道(CWE2100/CWE3200)或96通道(CWE9600/CWE960)的全自动核酸提取仪使用,实现高通量、自动化的DNA提取流程。

Q4:样本研磨有哪些推荐方法?
A4:

 可使用涡旋振荡仪、TissueLyser IIPowerLyzer 24FastPrep-24等设备。

Q5:使用型号二提取的DNA产量低的解决办法?
A5:

DNA产量低通常由以下原因导致,请根据实际情况优化操作:

1) 缓冲液蒸发。解决办法:确保缓冲液密封保存,避免蒸发。

2) 漂洗缓冲液未加入无水乙醇。解决办法:漂洗缓冲液1和2使用前应按试剂瓶标签说明加入对应量的无水乙醇。

3) 洗涤过程中DNA损失。解决办法:在磁力架上吸弃液体时,枪头不要接触附着在管壁上的磁珠团;充分晾干至磁珠表面呈哑光且无干裂后再洗脱。

4) 磁珠悬浮液混匀不充分。解决办法: 磁珠悬浮液使用前需充分涡旋混匀,每处理6-10个样本后需补充涡旋10秒以维持溶液稳定性。

Q6:使用型号二提取的DNA在下游应用中表现不佳该如何解决?
A6:

DNA在下游应用中表现不佳通常由以下原因导致:

1. 洗脱液中DNA含量极低。解决办法:请参考前文A5部分的解决方案。

2. 洗脱液中存在磁珠残留。解决办法:微量磁珠残留通常不影响实验结果。如需进一步去除,可将含有洗脱液的离心管置于磁力架上吸附后,小心转移上清至新管。

3. 存在盐离子残留。解决办法:严格按操作顺序使用漂洗缓冲液,特别注意要充分晾干至磁珠表面呈哑光且无干裂后再洗脱。

4. DNA用量过多影响下游实验。解决办法:过量DNA可能抑制酶反应,建议使用分光光度计在260nm处测定DNA浓度,精确控制使用量。

Q7:使用型号二产品纯化的DNA的A260/A280比值较低该如何解决?
A7:

DNA纯度偏低(A260/A280比值较低)的常见原因及解决方案:

1. 乙醇残留导致比值偏低。解决办法:洗脱前确保乙醇完全挥发。 

2. 蛋白质残留。解决办法:确保漂洗缓冲液1和2使用前按试剂瓶标签说明加入对应量的无水乙醇。

3. 未校正背景值造成偏差。解决办法:必须测定320 nm吸光度,并从260 nm和280 nm读数中扣除该背景值。

4. 水洗脱导致pH不稳定。解决办法:避免使用纯水洗脱,建议采用洗脱缓冲液维持稳定pH值。

Q8:使用型号三产品提取的DNA产量低的解决办法?
A8:

实验操作上需特别注意磁珠使用前应充分涡旋混匀,严格按照说明书要求放置96孔板,完整执行所有洗涤步骤。

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