FastClean Plant Genomic DNA Kit

植物基因组DNA快速提取试剂盒

¥398.00

CW0571S

50 preps
200 preps

- + [ 现货 ]

加入购物车

  • 产品介绍
  • 相关产品
  • 产品参数
  • 产品说明书
  • FAQs

本产品采用特异性结合DNA的离心柱和独特的缓冲系统,能从多种植物中分离纯化得到高质量基因组DNA,操作简便,可在30 min内完成提取。独特的溶液可以有效沉淀去除植物样本中的蛋白质、多糖以及酚类等杂质,提取的基因组DNA得率高、纯度高、质量稳定可靠,适用于PCR、荧光定量PCR、分子标记、文库构建等下游实验。



兼容性强:支持多种植物样本,可从茎、叶、花、果实、种子等不同组织中提取高纯度基因组DNA。
安全无毒:采用先进的缓冲系统,无需酚/氯仿等有毒试剂,使DNA提取更加高效、安全。
性能优异:提取的基因组DNA纯度高、完整性好。
操作简单:30 min内即可获得高质量的基因组DNA。


1. 样本兼容性强
【实验一】使用康为世纪CW0571提取植物叶片、种子、果实等样本,提取产物进行琼脂糖凝胶电泳分析,结果如下图:

图1:不同植物类型提取结果

实验结果表明:康为世纪植物DNA提取试剂盒可兼容植物叶片、种子、果实等样本,尤其适用于多糖多酚样本,获得的DNA浓度高、质量好。



2. 高效提取多种植物样本
【实验二】使用康为世纪CW0571与品牌A、B公司同类产品同时提取植物样本,提取产物进行琼脂糖凝胶电泳分析,结果如下图:

图2:CW0571与A、B公司同类产品对比结果
实验结果表明:康为世纪植物DNA提取试剂盒提取各种植物样本有更好的性能,可获取浓度高、纯度优的植物基因组DNA。



保存条件 运输条件
RT(15-30℃) 室温
Q1:Buffer GSL 出现沉淀怎么办?
A1:

此为正常现象。将 Buffer GSL 置于37℃水浴中溶解,摇匀后即可使用,不影响效果。

Q2:所有样本都需要70℃加热孵育吗?
A2:

不是。对于简单植物样本,破碎后震荡混匀,室温放置10分钟即可,无需加热。复杂样本建议70℃加热孵育10分钟。

Q3:如何提高复杂植物样本(如多糖多酚含量高)的DNA得率?
A3:

可在样本前处理步骤中加入 5% β-巯基乙醇,可有效提升得率。

Q4:漂洗完成后吸附膜有明显的颜色残留怎么办?
A4:

若柱膜有明显的颜色残留可利用500 μL无水乙醇漂洗一次,再进行后续步骤。

Q5:加入Buffer PA后出现絮状沉淀是否正常?
A5:

 正常。

Q6:能否用水洗脱DNA?
A6:

若下游实验对pH值或EDTA敏感,可采用灭菌水作为洗脱液。使用前需调节水的pH值至7.0-8.5(可用NaOH调节),pH值低于7.0会显著降低洗脱效率。如需长期保存洗脱产物,推荐使用Buffer TB,并于-20℃保存。

Q7:Spin Columns FS堵塞了怎么办?
A7:

需确保植物组织经液氮或组织破碎仪充分破碎,加入Buffer PSS后充分混匀,离心后小心吸取上清液避免吸入沉淀,对多糖多酚含量高的复杂样本应适当减少起始用量。

Q8:提取的DNA产量低的解决办法?
A8:

(1) 样本起始投入量不要超过所用方法的起始量标准;

(2) 样品保存时要尽可能的避免反复冻融;

(3) 样本应进行充分裂解:确保组织在液氮或组织破碎仪中充分破碎,并充分涡旋混合。

(4) Buffer CW1和Buffer GW2中无水乙醇添加量不准确或漏加:应按照试剂瓶标签正确添加无水乙醇。

(5) 确保无乙醇残留:空离后将吸附柱开盖室温静置数分钟,彻底挥发乙醇。6 洗脱不充分: DNA 产物洗脱的时候,预热洗脱液并滴加在膜中央位置,尽可能的覆盖整个吸附膜,增加洗脱体积或者二次洗脱也可增加产量。

Q9:提取的 DNA 纯度低的原因及该解决办法?
A9:

1. A260/A280比值低(<1.7)。原因:蛋白或乙醇残留导致污染。解决方法:

1) 确保裂解充分:使用前请检查Buffer GSL是否出现结晶或者沉淀,如有结晶或者沉淀,于56℃水浴孵育至重新溶解。 

2) 去除乙醇残留:吸附柱空离2分钟后将吸附柱开盖置于室温数分钟,以彻底晾干。

2. A260/A280比值高(>2.0)。原因:核酸降解。

解决方法:

1) 避免降解:使用新鲜样本,避免样本反复冻融。

2) 优化洗脱:若采用灭菌水作为洗脱液。使用前需调节水的pH值至7.0-8.5(可用NaOH调节)。

微信小程序

 客  服
 咨  询

公众号二维码