Magbead HMW DNA Kit
磁珠法高分子量DNA提取试剂盒
¥398.00
CW3701S
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- FAQs
该试剂盒创新性的采用了超顺磁性的微米级磁珠纯化技术，应用于广泛样本的高分子量 DNA（50-200kb）的提取，包括动物组织、血液、细菌和细胞等。高性能的磁珠能够使整个提取时间短至一小时之内，同时确保分离的DNA具有较高的得率和纯度。高度选择性的微米级磁珠结合技术，能够很大程度上减少提取过程中的剪切力，从而得到高纯度的高分子量DNA。纯化的DNA完整度高，长度长，适合运用于NGS、三代测序高质量DNA文库构建等下游分子生物学实验。
| 保存条件 | 运输条件 |
|---|---|
| 2-30℃ | 室温 |
适用于动物组织（如脾脏、肌肉等）、全血、细菌（革兰氏阳性/阴性菌）和培养细胞等样本的高分子量DNA（50~200 kb）提取。
DNA在下游应用中表现不佳通常由以下原因导致：
1. 洗脱液中DNA含量极低。解决办法：请参考前文A2部分的解决方案。
2. 洗脱液中存在磁珠残留。解决办法：微量磁珠残留通常不影响实验结果。如需进一步去除，可将含有洗脱液的离心管试管置于磁力架上吸附后，小心转移上清至新管。
3. 存在盐离子残留。解决办法：严格按顺序添加Buffer EB和Buffer TB，并确保洗涤步骤中彻底去除Buffer DW。必要时可用细尖移液枪头吸尽残留液体 。
4. DNA用量过多影响下游实验。解决办法：过量DNA可能抑制酶反应，建议使用分光光度计在260nm处测定DNA浓度，精确控制使用量。
5. 组织来源DNA发生降解。解决办法：样本量过大可能导致裂解不充分，使内源DNA酶未被完全灭活，建议减少起始样本量。
DNA纯度偏低（A260/A280比值较低）的常见原因及解决方案：
1. 乙醇残留导致比值偏低。解决办法：最后洗涤步骤需彻底去除乙醇，严格按说明书用Buffer EB冲洗磁珠。
2. 盐离子残留影响测量。解决办法：确保结合和Buffer DW洗涤后完全清除上清，必要时用细枪头吸尽残留液体。
3. 未校正背景值造成偏差。解决办法：必须测定320 nm吸光度，并从260 nm和280 nm读数中扣除该背景值。
4. 水洗脱导致pH不稳定。解决办法：避免使用纯水洗脱，建议采用Buffer EB等缓冲液维持稳定pH值。
Magbeads G严禁冰冻和离心，使用前需涡旋振荡30秒混匀。
操作过程中需轻柔混匀（避免剧烈震荡或涡旋），减少剪切力。
可以提，但由于cfDNA本身含量较少，且红细胞裂解后释放的核酸酶会降解cfDNA。建议使用专门的试剂盒进行提取。
