
Endofree Plasmid Mega Kit(Resin)
无内毒素质粒超量提纯试剂盒(树脂法)
¥4408.00
CW2115M
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本试剂盒是基于高特异性结合质粒 DNA 的独特树脂微球设计的一款质粒纯化产品,可满足高产量与高纯度的超螺旋质粒纯化需求。阴离子交换树脂微球填充的预装层析柱(COWIN-tip 2500),可从 500 mL 的 LB 菌液中纯化制备2.5 mg 转染级质粒 DNA, 适用于包括转染(原代、敏感以及悬浮细胞)、显微注射和基因治疗等多种研究。
▪ COWIN-tip 2500 预装层析柱的质粒载量高达 3 mg。
▪ 本产品制备的转染级质粒内毒素含量 < 0.05 EU/μg。
▪ 通过重力流方式,可在 2.5 小时内完成高纯度转染级质粒的制备。
▪ 适用于提取纯化 3-50 kb 大小的不同拷贝数质粒。

保存条件 | 运输条件 |
---|---|
RT(15-30℃) | 室温 |

若所提质粒拷贝数较低,可加大菌体使用量,同时按照比例增加Buffer RES、Buffer LYS、Buffer NEU的用量保证菌体可以被完全裂解,洗脱缓冲液Buffer ELU应在65℃水浴锅预热,同时在吸附和洗脱时可以适当地延长时间,以增加提取效率。若试剂盒中RES、LYS和NEU溶液不能满足实际用使用量是,客户可直接购买本公司的成品溶液和抽滤杯(COWIN-filter Mega Cartridge)。
(1)质粒拷贝数:载体因拷贝数差异会造成质粒产量明显的波动。高拷贝数的载体常有2-3倍的产量波动,(每毫升培养过夜的菌液,高拷贝数的质粒载体产量为3-16 μg)。长片段质粒和表达型载体常以中低拷贝数为主,每毫升菌液的产量约为0.5~2 μg。
◇低拷贝质粒:pBR322, pACYC 及其衍生载体,pSC101 及其衍生载体,SuperCos, pWE15;
◇高拷贝质粒:pTZ, pUC, pBS, pGM-T;
(2)菌种问题:菌种保存过程中存在质粒丢失现象,培养细菌前最好先划线活化,以稳定产量。
(3) 细菌未充分裂解:细菌须在Buffer RES/RNase A 中充分重悬,成团的细菌因无法裂解会降低产量。
(4) 试剂准备有误:Buffer LYS、Buffer NEU有沉淀析出,需37℃水浴几分钟至清亮方可使用(请勿剧烈晃动Buffer LYS);Endo-Free Buffer PW1加入乙醇体积不准确(使用前应按照试剂瓶标签的说明在Endo-Free Buffer PW1中加入无水乙醇)。
(5)实验操作不当:在异丙醇沉淀步骤中,由于形成的玻璃状DNA沉淀往往不易观察且松散附着于管壁,极易在后续操作中丢失。建议实验人员严格遵循本产品的《产品说明书》的标准流程进行实验操作。
(5)将Buffer ELU预热至65℃,并重复二次洗脱。
(6)培养时间过长或在 2-8℃保存时间过长会明显降低产量,建议使用新鲜的菌液。
(7)对于难处理的DNA沉淀,可尝试降低离心速度或改用预冷70%乙醇进行轻柔洗涤等优化措施。
37℃水浴混匀至澄清后使用,请勿剧烈晃动Buffer LYS。
加入Buffer LYS后应温和混匀,不要剧烈震荡,以免打断基因组DNA。此步骤所用时间应不超过5分钟,避免质粒受到破坏。
导致RNA污染,需补加RNase A至Buffer RES(终浓度200 μg/mL),混匀后2-8℃保存。
乙醇残留。Endotoxin-free Buffer PW1 洗涤后可延长干燥时间,待质粒DNA沉淀表面乙醇挥发完全后再加入Buffer TE-EF或Endotoxin-free H2O。
不可以,因为酵母是真菌,细胞壁比大肠杆菌(细菌)的更厚,因此使用CW2115M更难裂解,建议使用Yeast Plasmid Mini Kit(CW0509S )提取。
可以。最好按照标准存放。
(1)储存温度不当或超出有效期:已加入RNase A的Buffer RES长时间室温放置可能会出现酶活下降,使用后应及时放回2 ~ 8℃。
(2)菌液体积过高:由于菌体数量过多,导致Buffer RES中RNase A不足以消化菌体中的RNA,建议减少菌液体积进行实验。
可以,该试剂盒提取的质粒纯度满足测序、PCR、酶切和转染等需求。
通过轻微加热溶液(例如37℃孵育)并延长溶解时间来重新溶解DNA。
在质粒条带上方出现的拖尾现象可能表明质粒提取物中存在基因组DNA污染。虽然这种情况并不常见,但基因组DNA可能在裂解过程中被剪切并与质粒共同纯化。加入Buffer LYS后剧烈摇晃或涡旋可能会产生断裂的基因组DNA,应避免这种情况。如果裂解液非常粘稠且混合不均匀,建议减少实验使用的细胞起始量。
A260/280比值通过比较核酸最大吸收峰260nm与蛋白质最大吸收峰280nm的吸光度值,可评估所洗脱DNA的相对纯度。若中和反应不充分或洗涤步骤不完全,可能导致过量蛋白质残留在基质中并与DNA共同洗脱。
培养基成分和某些细胞成分会降低A260/A230比值。按照实验方案操作可确保去除这些污染物。此外,某些颗粒物可能与DNA一起洗脱,从而影响该比值。若出现这种情况,可在分光光度计(如Nanodrop®)检测前对洗脱的DNA进行额外15秒离心以沉淀颗粒物。
虽然Buffer ETR能去除样品中绝大部分内毒素,但无法保证回收的DNA完全不含内毒素。需要说明的是,我们已成功使用该试剂盒回收的质粒DNA转染多种耐受性强的细胞系。尽管其他供应商可能宣称其小提试剂盒"无内毒素",但通常仍可检测到微量内毒素存在。
负压抽滤装置(含收集瓶)、离心机、无热原耗材(吸头、离心管等)。
为确保实验材料无内毒素污染,建议遵循以下操作规范:首选经认证的无热原/内毒素一次性塑料耗材(市售多种品牌可选),避免使用玻璃器皿—因其表面易吸附内毒素且常规清洗和高压灭菌均无法有效清除(若必须使用玻璃器皿,需180℃干热过夜处理)。特别注意曾接触细菌的灭菌锅会造成玻璃器皿二次污染。
关键确保菌液与Buffer RES/LYS充分混合裂解。不完全混合会导致裂解液粘稠,进而堵塞滤膜基质。建议:(1)加入Buffer RES后完全重悬细胞;(2)加入Buffer LYS后充分混匀;(3)Buffer NEU加入后充分混合使细胞碎片形成白色沉淀上浮。若白色沉淀未上浮,可用无菌枪头将其从管壁剥离,否则会积聚在滤膜上导致堵塞。使用CWBlue试剂可确保获得最佳混合效果。
Buffer EQU是平衡液,其中的表面活性剂降低了溶液表面张力,使得COWIN-TIP 500柱中的溶液易于形成重力流,进而便于完全排尽柱中溶液。
主要步骤依赖重力流层析(无需离心机),但菌液收集和质粒浓缩时需离心(≥15,000×g)。
非必需,但建议添加以便监控裂解(变蓝色)和中和(无色+白色沉淀)效果。