miRNA Purification Kit

miRNA提取试剂盒

¥748.00

CW0627S

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推荐一类医疗器械备案产品,CWY113S

miRNA提取试剂盒专用于从各种动物组织、植物组织、细胞、血清、血浆等样本中分离纯化miRNA,还可以提取siRNA,snRNA等其他小于200 nt的小分子RNA,同时也可用于总RNA的提取。本品将酚/胍裂解技术和硅基质膜纯化技术相结合,独特的裂解液在有效抑制RNases的同时,可以通过有机抽提的方法除去细胞或组织样品中的大部分DNA和蛋白。对于一些敏感的下游实验中,如需富集miRNA可适用该试剂盒单独对miRNA进行富集。本品适用样本范围广,制备的RNA纯度高,可直接用于敏感的下游应用,如Northern Blot分析,Real-Time PCR,Microarray Analysis等。

保存条件 运输条件
TRIzon Reagent 2-8℃ in the dark,others RT(15-30℃) 常温
Q1:CWY0627S的主要特点和预期用途是什么?
A1:

本试剂盒专为高效分离纯化miRNAsiRNAsnRNA等小于200 nt的小分子RNA而设计,同时也可用于总RNA的提取。纯化的RNA适用于各种敏感的下游应用,如Northern BlotReal-Time PCRMicroarray Analysis等。

Q2:试剂盒适用于哪些样本类型?
A2:

适用于组织、细胞、血浆或血清等多种样本类型。

Q3:离心后溶液不分层,或分层不明显的原因及解决办法?
A3:

离心后溶液不分层,主要可能由以下原因导致:

1) 混合不充分:加入氯仿后,需剧烈振荡至少15秒,以确保充分混合。

2) 氯仿比例错误:请务必确认氯仿添加量准确无误。标准比例为每使用1 mL TRIzon Reagent需加入0.2 mL氯仿。

3) 样品过载或过于粘稠:当处理蛋白、多糖或脂肪含量高的特殊样本时,裂解液会异常粘稠,阻碍分相。可在加入氯仿前,先将样品混合液于 4℃、12,000 rpm 离心5分钟,弃除沉淀,取上清进行后续操作。

若已发生不分层情况,可尝试以下补救措施:

1) 再次混合与离心:在确认氯仿已按比例添加的前提下,将反应液再次剧烈振荡,并于 4℃、12,000 rpm 条件下重新离心。

2) 追加氯仿:若高度怀疑氯仿添加量不足,可谨慎地补加少量氯仿,随后充分振荡并离心。

Q4:氯仿抽提后,转移水相时需要注意什么?
A4:

离心后样品分为三层(有机相、中间层、无色水相)。应小心吸取最上层的无色水相,切勿吸到中间层或下层,否则会严重污染RNA,影响纯度和下游实验。

Q5: 为什么我的RNA产量很低?
A5:

可能的原因包括:

1) 样品降解:提取的样品应避免反复冻融。

2) 裂解不充分:加入TRIzon Reagent后需反复吹打使样本充分裂解 。

3) 洗脱体积过小:RNase-Free Wate体积不应小于30 μL,体积过小影响回收率

4) Buffer RWTBuffer RW2未按试剂瓶标签加入相应体积的无水乙醇:Buffer RWTBuffer RW2第一次使用前应按照试剂瓶标签说明加入相应体积的无水乙醇。

Q6:如何避免提取的RNA中有DNA污染?
A6:

1) 对于含较多蛋白、脂肪、多糖等样品,可在加入氯仿前先进行离心(4℃, 12,000 rpm, 5分钟),弃除沉淀,取上清进行后续操作。

2) 吸取水相时需小心,可适当保留,切勿吸到中间层和下层,避免基因组污染。

3) 加入氯仿后,需在4℃下离心。

Q7:如何预防RNase污染:
A7:

1) 使用无RNase的塑料制品和枪头,避免交叉污染。

2) 玻璃器皿应在使用前于180℃高温下干烤4小时,塑料器皿可在0.5 M NaOH中浸泡10分钟,用水彻底冲洗后高压灭菌。

3) 配制溶液应使用无RNase的水。

4) 操作人员戴一次性口罩和手套,实验过程中要勤换手套。

Q8:A260/A280比值偏低怎么办?
A8:

A260/A280比值低可能的原因及解决方案如下:

1) 水相吸取时被酚或蛋白污染。解决方案:吸取水相时需小心,可适当保留,切勿吸到中间层和下层,避免基因组污染。

2) 样品裂解不充分。解决方案:可以适当增加TRIzon Reagent或者降低样品投入量进行提取。

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