NuClean Plant Genomic DNA Kit
新型植物基因组DNA提取试剂盒（适用多糖多酚）
¥398.00
CW0531S
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| 保存条件 | 运输条件 |
|---|---|
| RT（15-30℃） | 常温 |
不可以。
取约100 mg新鲜植物组织或20 mg干燥组织，用液氮充分研磨成粉末，避免反复冻融，否则可能导致DNA断裂或得率下降。
是正常的，立即混匀即可，沉淀不影响后续实验。
如果吸附膜呈现绿色，可向吸附柱中加入500 μL无水乙醇，离心1分钟，再进行后续步骤。
若下游实验对pH值或EDTA敏感，可采用灭菌水作为洗脱液。使用前需调节水的pH值至7.0-8.5（可用NaOH调节），pH值低于7.0会显著降低洗脱效率。如需长期保存洗脱产物，推荐使用Buffer GE，并于-20℃保存。
预防堵塞需充分研磨组织并确保转移上清时避免吸入沉淀。
（1） 样本起始投入量不要超过所用方法的起始量标准。
（2） 样品保存时要尽可能的避免反复冻融。
（3） 样本应进行充分裂解：确保组织在液氮中充分研磨，并充分涡旋混合。
（4） Buffer LP3和Buffer GW2中无水乙醇添加量不准确或漏加：应按照试剂瓶标签正确添加无水乙醇。
（5） 确保无乙醇残留：空离后将吸附柱开盖室温静置数分钟，彻底挥发乙醇。（6） 洗脱不充分： DNA 产物洗脱的时候，预热洗脱液并滴加在膜中央位置，尽可能的覆盖整个吸附膜，增加洗脱体积或者二次洗脱也可增加产量。
1. A260/A280比值低（<1.7）。原因：蛋白或乙醇残留导致污染。解决方法：
1) 确保裂解充分：使用前请检查Buffer LP1和Buffer LP2是否出现结晶或者沉淀，如有结晶或者沉淀，于56℃水浴孵育至重新溶解。
2) 去除乙醇残留：吸附柱空离2分钟后将吸附柱开盖置于室温数分钟，以彻底晾干。
2. A260/A280比值高（>2.0）。原因：核酸降解。
解决方法：
1) 避免降解：使用新鲜样本，避免样本反复冻融。
2) 优化洗脱：若采用灭菌水作为洗脱液。使用前需调节水的pH值至7.0-8.5（可用NaOH调节）。
