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Fast Magbead Free-Circulating DNA Maxi Kit

快速磁珠法大体积游离DNA提取试剂盒

¥1098.00

CW3720S

2 mL×48 preps

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该试剂盒适用于从1-5 mL血浆、血清、尿液等无细胞体液中纯化回收游离DNA（Freecirculating / Cell-free DNA）。试剂盒将常温裂解与核酸吸附合为一步，无冰浴过程，无需暂停加入结合液和磁珠，大幅度简化了操作步骤。高盐时，游离DNA结合于硅基包被的磁珠表面。漂洗后，游离DNA洗脱于无酶水中。游离DNA的得率与样品类型、储存条件、时间以及个体间差异有很大关系。试剂盒具有提取效率高，重复性好，操作过程简单、高效和快速等特点，纯化得到的游离DNA质量稳定、可靠，可用于定量PCR、二代测序文库构建等下游常规实验。



▪ 高得率：提取产量高，目的小片段占比高

▪ 广兼容：适用于从1-5 mL血浆、血清、尿液等无细胞体液纯化高质量游离DNA。

▪ 操作便捷：裂解和结合合为一步，无需冰浴与暂停。

▪ 可自动化：兼容手动提取和自动化高通量提取。


1. 高浓度，高得率

【实验一】分别使用康为世纪CW3720S与竞品T的磁珠法游离DNA大量提取试剂盒提取6例2 mL血浆，提取后的核酸分别使用Qubit进行浓度测定，结果如下。


图1：两种试剂盒提取的血浆游离核酸浓度

实验结果表明：康为世纪CW3720S 提取血浆游离核酸浓度优于竞品T。


2. 优秀的片段分布

【实验二】提取后的核酸分别使用Qsep100检验片段分布情况，结果如下：


图2：提取的核酸片段分布图

实验结果表明：与浓度结果对应，康为世纪CW3720S提取获得的核酸主峰显著优于竞品T。


3. 高质量文库

【实验三】提取后的核酸分别以等ng样本量投入，并使用康为世纪CW3045S DNA文库快速制备试剂盒进行文库构建，出库产物分别使用Qubit荧光计进行浓度测定，结果如下：

实验结果表明：投入等ng核酸进行预建库构建，康为世纪CW3720S优于竞品T的出库浓度。


4. 良好的测序数据

【实验四】根据文库产物浓度进行混样，使用杂交捕获试剂盒等试剂进行杂交捕获文库构建，然后在MGI平台进行杂交文库测序。测序结果如下：

实验结果表明：测序质控数据显示，康为世纪CW3720S略优于竞品T。



一次性使用游离DNA保存管

货号：CWY036M / 10 mL，50支/盒

¥798.00

Urine DNA Storage Tube

货号：CW2657M / 10套

¥398.00

Fast DNA Library Prep Set for Illumina&MGI

货号：CW3045S / 24 rxns

¥1598.00

甲基化检测样本前处理试剂盒

货号：CWY105M / 型号I，50测试/盒

¥1298.00

Multiplex Probe Mixture (for bisDNA)

货号：CW3317S / 1 mL

¥428.00
保存条件 运输条件
Magbeads ZN 2-8℃，其余组分室温（10-30℃） Magbeads ZN 冰袋运输，其余组分室温运输
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Q1：CW3720S适用于哪些类型的样本？
A1：

适用于从 1–5 mL 血浆、血清、尿液等无细胞体液 中提取游离DNA

Q2：DNA产量低的可能原因及解决方案？
A2：

可能原因包括：

1) Proteinase K失活（因加样顺序错误）。解决办法：必须最先加入Proteinase K，再加样本和Buffer CTL。

2) 样品质量不佳。解决办法：样品应避免反复冻融。

3) 磁珠结合不充分。解决办法：使用前必须涡旋振荡Magbeads ZN至少30秒，确保磁珠完全重悬。裂解结合步骤必须室温振荡20分钟，确保磁珠悬浮。处理多个样本时，应每隔几个样本重新混匀一次，防止磁珠沉降。

4) 洗脱效率不足。解决办法：使用预热的RNase-Free Water（55–60℃），并确保涡旋重悬后，1600rpm振荡洗脱10分钟。

5) 磁珠在晾干过程中过度干燥。解决办法：乙醇挥发（晾干）时间不宜过长。待管壁液体挥发后，观察到磁珠表面由湿润反光变为哑光、且无干裂状时即可。

6) 漂洗液配制错误。解决办法：Buffer GCW2第一次使用前应按照试剂瓶标签的说明加入无水乙醇并做好标记。

Q3：Magbeads ZN使用应注意什么？
A3：

Magbeads ZN严禁冰冻或离心，否则可能造成不可逆的损伤，使用前需充分振荡混匀以确保均匀性。

Q4：Buffer CTL/CTW 出现沉淀怎么办？
A4：

使用前请先检查Buffer CTL和Buffer CTW是否出现结晶或沉淀，如有结晶或沉淀现象，可在50℃水浴几分钟，即可恢复澄清。

Q5：是否支持自动化提取？
A5：

支持康为CWE240全自动核酸提取仪。

Q6：不同样本体积的试剂用量如何调整？
A6：

详见说明书第4页附表，按样本体积（1–5 mL）调整各试剂用量。

Q7：使用CW3720纯化的DNA在下游应用中表现不佳该如何解决？
A7：

DNA在下游应用中表现不佳通常由以下原因导致：

1) 洗脱液中DNA含量极低。解决办法：请参考前文A2部分的解决办法。

2) 洗脱液中存在磁珠残留。解决办法：微量磁珠残留通常不影响实验结果。如需进一步去除，可将含有洗脱液的离心管置于磁力架上吸附后，小心转移上清至新管。

3) 存在盐离子残留。解决办法：严格按说明书操作顺序进行漂洗，漂洗完成后确保乙醇完全挥发。 

4) DNA用量过多影响下游实验。解决办法：过量DNA可能抑制酶反应，建议使用分光光度计在260 nm处测定DNA浓度，精确控制使用量。

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