Magbead Plant RNA Kit

磁珠法植物RNA提取试剂盒

¥898.00

CW3710S

96 preps

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本试剂盒提供了一种简单、高效的植物RNA自动化提取方案。植物组织经物理方法破碎后,裂解产物中的RNA在高盐存在时结合于硅基包被的磁珠表面,经漂洗液漂洗去除蛋白质等杂质,然后加入DNase I去除DNA,最后RNA经过漂洗后洗脱于RNase-Free Water中。本试剂盒提取得到的总RNA纯度高,无基因组DNA、蛋白质和其它杂质的污染,可用于Real Time RT-PCR、RT-PCR、Northern Blot、Dot Blot和体外翻译等多种下游实验。


安全无毒:无需使用酚氯仿、β-巯基乙醇和DTT等有毒试剂。

高效提取:完整性好,得率高,无DNA 残留。

兼容性广:可兼容各种普通植物和多糖多酚植物的茎、叶、花、果实等组织。

操作简便:无需加热、蛋白酶K等操作。

高通量自动化:提取迅速,约35分钟即可完成96个样本的总RNA提取。


1.高得率

普通植物及水果果肉:

【实验一】分别取100 mg辣椒、番茄、桃叶、豇豆叶、玉米叶、花生叶,使用康为世纪和A公司的磁珠法植物RNA提取试剂盒进行总RNA提取,洗脱体积为100 μL,提取结果如下:


图1:普通植物及水果果肉总RNA提取浓度


图2:普通植物及水果果肉RNA提取纯度

图3:普通植物及水果果肉总RNA提取琼脂糖凝胶电泳图

实验结果表明:康为世纪磁珠法植物RNA提取试剂盒能够高效的从各种普通植物和果肉中提取高质量RNA。获得的总RNA完整性好,得率高,无DNA 残留。


多糖多酚植物:

【实验二】分别使用康为世纪和A公司的磁珠法植物RNA提取试剂盒对不同多糖多酚植物样本进行RNA提取,提取结果如下:


图4:多糖多酚植物总RNA提取琼脂糖凝胶电泳图


表1:多糖多酚植物总RNA提取浓度和纯度表

实验结果表明:康为世纪磁珠法植物RNA提取试剂盒能够高效的从各种多糖多酚植物中提取高质量RNA。获得的总RNA完整性好,得率高,无DNA 残留。


2. 样本兼容性广

【实验二】分别取100 mg各类型的植物样本,使用康为世纪磁珠法植物RNA提取试剂盒,进行总RNA提取,100 μL洗脱。提取结果如下。


图5:各种植物样本总RNA提取琼脂糖凝胶电泳图

实验结果表明:康为世纪磁珠法植物RNA提取试剂盒可以兼容各种类型的植物样本。获得的总RNA完整性好,得率高,无DNA 残留。

保存条件 运输条件
DNase I, 10×Reaction Buffer -20℃,others RT (15-30℃) DNase I及10×Reaction Buffer冰袋运输,其余组分室温运输
Q1:是否支持自动化提取?
A1:

支持。CW3701S适配 CWE2100  CWE960 全自动核酸提取仪。

Q2:Magbeads PN 应如何保存和处理?
A2:

严禁冷冻或高速离心,否则可能导致磁珠不可逆损坏。使用前需充分混匀,避免沉淀。

Q3:CW3701S是否适用于所有植物组织?
A3:

不推荐用于高淀粉植物组织(如小麦干种子、玉米干种子),因其易形成胶状物,影响提取效果。

Q4:如何预防RNase污染?
A4:

1) 使用无RNase的塑料制品和枪头,避免交叉污染。

2) 玻璃器皿应在使用前于180℃高温下干烤4小时,塑料器皿可在0.5 M NaOH中浸泡10分钟,用水彻底冲洗后高压灭菌。

3) 配制溶液应使用无RNase的水。

4) 操作人员戴一次性口罩和手套,实验过程中要勤换手套。

Q5:提取的RNA中是否会有DNA残留?
A5:

试剂盒包含 DNase I 处理步骤,可有效去除基因组DNA污染,无需额外处理。

Q6:RNA得率低可能是什么原因?
A6:

1) 样本未充分破碎或裂解不完全;

2) 磁珠未充分混匀或结合时间不足;

3) Buffer PGW1 或 RW2 中未正确加入乙醇;

4) 乙醇残留未彻底挥发,影响洗脱效率。

Q7:洗脱后RNA浓度偏低怎么办?
A7:

1) 确保磁珠干燥适度(表面哑光无裂痕);

2) 可适当延长65℃震荡洗脱时间;

3) 尝试用预热的RNase-Free Water进行洗脱。

Q8:DNase I工作液如何配制?
A8:

52 μL RNase-Free Water向其中加入8 μL 10×Reaction Buffer20 μL DNase I1U/ μL),混匀,配置成终体积为80 μL的反应液,配置好后放在冰上储存。

Q9:提取的RNA纯度低(A260/A280或A260/A230比值异常)的解决办法?
A9:

RNA纯度低通常由以下原因导致,请根据实际情况优化操作:

1) 组织研磨不充分或起始量过大会导致裂解不完全,使蛋白质、多糖等杂质大量残留。解决办法:确保组织充分破碎,并严格遵守试剂盒推荐的样本量范围,对于难裂解组织可适当减量。

2) 洗涤步骤不彻底会直接导致盐离子或乙醇残留。解决办法:确保向浓缩洗涤液(Buffer PGW1和Buffer RW2)中正确加入无水乙醇,并遵循指定的洗涤次数和体积。完成洗涤后需充分晾干(约5-10分钟),直至磁珠表面呈哑光,确保乙醇完全挥发。

3) 基因组DNA残留会使A260/A280比值偏高。解决办法:提取过程中增加DNase I消化步骤并确保DNase I活性完好,以彻底去除gDNA污染。

4) RNA降解会导致纯度下降和功能丧失。这通常由RNase污染或操作过程温度过高引起。解决办法:必须全程使用无RNase的枪头、离心管,佩戴手套并勤换,操作尽量快速并在低温下进行。提取完成后应立即将RNA分装并保存于-70℃冰箱,避免反复冻融。

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